亚洲人头发移植的实践方面：10-持有溶液，条件和添加剂以优化毛囊活力和功能

10.1简介

本章的目的是提供毛囊储存溶液的概述以及影响毛发修复手术移植组织活力的条件。此时，没有完美的储存溶液，也没有可以保存100％移植组织的条件或添加剂，因为组织解剖过程导致活细胞不可避免地从各种物理和生物化学因素中丧失。可以解决的是如何最好地保留构成毛囊的剩余细胞群（即上皮，结缔组织，肌肉和神经组织）。重要的是要注意每个组织具有不同的代谢需求，因此优化的存储解决方案必须考虑如何平衡细胞类型之间的差异。在某些方面，毛囊的成功保存与实体器官的保存没有显著差异，除了毛囊缺乏用于灌注的蒂（保存溶液），并且存在明显的尺寸差异。由于关于毛囊最佳保存条件的公开信息有限，所提供的一些信息将利用复杂组织和器官保存的研究较多的领域作为如何优化毛囊单位（FU）的模型。可行性。

头发移植手术的持续时间很少超过12小时，典型的FU移植物体外时间在2到8小时之间。虽然这个时间段与一些实体器官移植时间（> 24 h）相比相形见绌，但使用错误的FU移植物保持液并且以错误的方式，可能导致完全移植失败[1]。例如，设计用于2-8°C的保存液在常温（37°C）下表现不佳[2,3]。在许多情况下，保存溶液是专门为某些类型的器官或组织开发的，并且使用在心脏移植手术中效果很好的保存溶液在毛发移植程序中可能不会很好。此外，由于没有针对毛发移植设计的特定保存解决方案，外科医生不得不依赖于最不理想的解决方案。本章将探讨HRS中使用的大多数现有保存解决方案，以阐明哪种保存溶液，添加剂和条件接近最佳保存毛囊。

保存期间毛囊中发生的生化和生理挑战是了解如何最佳地优化和选择移植物保存溶液的关键。毛囊使用有氧糖酵解产生90％的ATP产生，这一事实表明毛囊需要大量的ATP才能生存和发挥作用[4]。在FU分离的过程中，停止向FU的血流，结果从此时起的组织遭受缺氧。缺氧导致细胞ATP产生减少和ATP降解产物次黄嘌呤的增加。一旦通过新血管形成恢复正常的氧张力（通常在术后2-3天），卵泡细胞中的次黄嘌呤被转化为黄嘌呤，并且在此过程中形成游离氧自由基（例如，IRI）破坏蛋白质，脂质和DNA / RNA [5]。因此，增加细胞内ATP，防止次黄嘌呤积聚或帮助减少氧自由基的添加剂对于最大化缺氧期间的生存力是必不可少的。

10.2毛囊移植物保持解决方案

关于哪种移植物保持溶液用于FUE或FUT程序肯定没有太多共识。最广泛使用的保存溶液是生理盐水，林格氏乳酸盐和血浆 -  Lyte A [6]。令人惊讶的是，这些溶液都不被认为是组织保存溶液，而是设计用于静脉冲洗和水合[7-9]。相反，复合组织和器官的移植采用更专业的保存溶液，专门设计用于保持离体细胞/组织的最大活力。一个很好的例子是威斯康星大学（UW）解决方案，旨在保护肝脏，肾脏和胰腺。本节将介绍HRS中最常用的移植物固定解决方案以及每种解决方案的优势和弱点。

10.2.1正常盐水（NS）

NS（0.9％NaCl在注射用水中）的普及并不归因于NS的组成，而是因为它便宜并且“其他”成功使用NS。虽然可以理解NS可以导致“成功”的反式植物，但它也可能导致显著的移植失败[10,11]。 NS的主要问题是它没有缓冲，也没有解决缺氧和体温过低时组织存活的生化和生理影响。 NS具有接近5.0的pH，其显著低于7.39的细胞内pH。来自NS的质子水平的增加导致细胞内pH的显著降低。细胞内pH从7.39降低至6.8将导致促细胞凋亡途径的诱导，从而导致FU中活细胞的丧失。

除了pH问题，NS还没有任何可用于产生ATP的底物。没有葡萄糖或一些底物产生细胞内ATP，所有需要ATP的途径的活性都显著降低。虽然细胞确实含有一些糖原储备，但时间的累积效应会减少这些储存，从而导致细胞凋亡或坏死。用生理盐水体外培养细胞和组织导致细胞形态和细胞功能的立即变化，表明NS的作用可能同样对毛囊细胞有害[12]。

同样重要的是在低温保存中使用NS时缺乏不透性。在体内，作者身体的细胞使用细胞外蛋白质和其他不渗透的分子来控制水和离子通过细胞膜的通量。由于缺乏这些不渗透物，保存在NS中的毛囊细胞会膨胀，导致细胞去极化并可能导致细胞死亡[1,13]。那么，为什么毛囊在NS中存活？答案是由于温度降低对卵泡组织的影响而导致代谢需求减少，从而保留足够的多能干细胞以在缺氧条件下存活。 Beehner的研究支持了这一想法，他允许移植物在放置前在Telfa垫上脱水16分钟。尽管FU植入时脆弱，但60％的单毛FU存活，82％的双毛FU存活[14]。同样，Limmer发现88％的FU移植物在盐水中存活8小时后存活[15]。这可以解释为什么NS在HRS中是成功的，也可以解释NS的侮辱导致的毛发生长延迟。

10.2.2林格氏乳酸（RL）

Ringer的解决方案经过修改，含有乳酸，有助于治疗代谢性酸中毒。自其发明以来，它已被用作IV水合溶液，并且在较小程度上用作灌洗溶液。林格氏乳酸盐（RL）的组成和性质如表10.1所示。 RL由与人细胞中发现的几乎相同水平的钠，氯化钾和钙组成。这些重要离子有助于维持所有细胞的膜电位，因此RL减少了与NS相关的离子不平衡问题。但是，RL有几个属性不能使它成为FU保存的好选择。

RL使用乳酸钠作为pH的缓冲剂，在足够的时间和细胞辅助下，它可以变成碳酸氢盐并吸收质子。乳酸转化为碳酸氢盐主要发生在肝脏中，因此在FU中转化缓慢，乳酸的缓冲能力受到质疑[16]。 RL具有~6.2的pH，其显著低于毛囊细胞的细胞内pH，因此发生细胞细胞质的酸化，可能导致凋亡。此外，RL具有约274mOsm-kg的重量摩尔渗透压浓度。这略低于285-295mOsm-kg的血浆渗透压参考范围，这可导致离子的被动泄漏和细胞膨胀，尤其是在离子泵活性显著降低的低温温度下。

RL确实具有能量来源，其中乳酸可被细胞用于通过Cori循环产生丙酮酸。然而，RL中的乳酸水平（28 mM）足以产生少于毛囊细胞所需ATP的10％[4]。

10.2.3血浆 - 裂解液A（PL）/ Normosol

与生理盐水和林格氏乳酸盐作为FU移植物保持溶液相比，Plasma-Lyte A / Normosol（PL）具有几个独特的优点。首先，Plasma-Lyte A使用醋酸盐和葡萄糖酸盐作为缓冲剂;两者都旨在提高碳酸氢根离子水平[9,17]。 PL具有7.4的pH，其非常接近细胞内pH，因此，PL被认为对细胞具有碱化作用，其应当减少缺氧卵泡细胞中的酸中毒。然而，葡萄糖酸盐的碱化作用已被质疑[17]并且依赖于细胞的代谢，并且这通常在缺氧和低温下受损。 PL具有295mOsm-kg的重量摩尔渗透压浓度，其也非常接近细胞渗透压。 PL还使用乙酸盐，其可以转化为丙酮酸作为能源。由于这些因素，PL在三种晶体溶液中显然更有助于维持FU细胞活力。

虽然PL设计用于IV水合和灌溉，而不是用于保存细胞和组织，但有证据支持其在组织保存中的作用。在Wise等人最近的一项研究中证实了PL，其中与威斯康星大学溶液，Celsior溶液和谷胱甘肽 - 抗坏血酸-L-精氨酸相比，发现Plasma-Lyte A在保留隐静脉移植物功能方面同样有效。解决方案（GALA）[16]。

10.2.4 低温热溶胶（HT）

低温热溶胶（HT）专门用于在低温下保存细胞和组织，其组分和物理特性与上述三种晶体溶液非常不同（表10.2）。 HT具有显著高的钾浓度并含有不渗透物，使其成为细胞内溶液[7,10]。钾和不渗透剂都有助于减少离子的被动泄漏，从而减少细胞膨胀。 HT含有腺苷和还原型谷胱甘肽作为代谢产物。细胞可通过腺嘌呤核苷酸补救途径使用腺苷来制造ATP，ADP和AMP，并且是干细胞代谢中的常见元素[18]。谷胱甘肽是细胞中最主要的水溶性自由基清除剂，其对于减少缺氧诱导的氧自由基产生的细胞损伤是重要的。此外，HT使用含有磷酸盐和碳酸氢盐的HEPES缓冲液，调节至pH 7.6。这种缓冲策略产生一种微碱性环境，允许代谢组织产生的任何过量产物被吸收而不会显著影响pH。此外，HEPES是一种非常强的缓冲液，pKa为7.5，能够在不改变pH的情况下吸收显著水平的质子。 HT的高渗透压降低钾渗漏，从而减少细胞肿胀，膜电位变化和ATP消耗。

表10.1


表10.2.组成


Beehner进行了一项研究，其中将HT与NS进行比较，发现在储存2小时后使用HT增加了FU存活率。 5天后，与NS相比，HT离体移植的存活率几乎高出三倍[19]。在Perez-Mesa等人的另一项研究中，HT在离体后24和48小时保留毛囊方面优于Custodiol溶液[20]。虽然大多数HRS不使用长期储存的FU，但它确实表明FU细胞群保存得更好，可能影响毛发移植结果。

10.2.5培养基：Williams E（WM）和DMEM Media

鉴于大量出版物使用培养基来支持离体的细胞和组织活力，在FU保存中使用培养基似乎是一个明显的选择。许多医生报告在移植物分离和保存期间使用Williams E培养基（WM）获得了优异的结果[21]。 WM是一种细胞外类型保存解决方案，其中组分被创建以模拟细胞外环境。与其他保存介质不同，WE含有所有必需氨基酸，必需维生素和无机盐。它含有用于细胞能量产生的葡萄糖和丙酮酸以及作为自由基清除剂的谷胱甘肽。 WM已经证明可以增加条件性角质形成细胞的毛发生长，因此WM似乎是HRS的良好选择[22]。然而，这些研究是在常温下进行的，并且WM在低温下的作用是未知的。已知的是，在低温保存期间低浓度的不渗透物和低钾可导致细胞膨胀和膜电位的损失，如前所述。

Dulbecco's Modified Eagles Media（DMEM）已成功应用于头发研究人员，专注于离体毛囊培养[23,24]。用iNOS抑制剂补充的DMEM显示减少移植后脱落[25]。在Dong等人的研究中使用Wnt1条件DMEM来激活真皮乳头细胞并促进毛囊再生[26]。然而，DMEM被设计用于常温，并且当在降低的温度下使用时，与HT相比，它在FU活力方面显示出更低的效果[7]。

FU经历各种影响生存能力和功能的生化和生理挑战。最重要的是pH，渗透压和温度的变化[1,27]。细胞以稳态存在，抵抗（在正常条件下）来自最佳生化环境的任何变化。然而，存在许多实例，其中移植物分离和植入的过程导致次优条件。例如，细胞内pH值降低0.5-1.0足以使大多数细胞进入细胞凋亡[28,29]。因此，使用无缓冲溶液，如生理盐水，可能会因细胞内质子积累和钠质子反向运动功能降低而导致细胞凋亡[30]。本节将研究pH，渗透压和温度变化如何影响FU的存活。

10.3.1 pH和移植物存活率

在正常条件下，人体细胞的细胞内pH为~7.39。在缺氧或缺血的情况下，由于许多代谢级联，质子的细胞内积累增加。随着细胞内pH降低至7.39以下，许多细胞溶质和膜结合蛋白的功能受到影响，导致功能改变。如果细胞具有足够的ATP，它可以使用许多酶来减少质子的积累，例如碳酸酐酶，钠质子反向运输，乳酸/质子反向运输和缓冲[30]。如果不控制细胞内质子水平，则FU细胞的存活率很可能降低。

有许多方法可以预防HRS的pH值变化。最明显的是使用缓冲移植物保持溶液。最佳pH缓冲剂将使移植物保持溶液的缓冲能力最大化。缓冲能力是必须加入1L溶液中以使其pH值改变一个单位的强酸或碱（以克当量计）的量。当缓冲液的pH = pKa时，缓冲能力是最佳的。在NS和RL的情况下，pKa不存在或显著低于细胞pH。 低温热溶胶使用HEPES，其pKa为7.5，因此与其他生理缓冲液相比可以吸收更多的质子。然而，由于研究表明超过25 mM的浓度可能对细胞有毒，因此可以使用多少HEPES缓冲液是有限的[31]。

可以降低移植物保持溶液的pH的另一个因素是RBC的溶血。当发生溶血时，血红蛋白和血红素会释放，导致氧化应激增加，细胞内信号传导也会降低细胞代谢[32,33]。膜结合蛋白和脂质的氧化增加导致细胞内pH的显著改变。因此，当分离FU时，应首先将它们用过量的移植物保持溶液洗涤以除去RBC，以防止溶血的破坏作用。此外，移植物保持溶液的更换对FU存活具有额外的影响。众所周知，组织的静态储存会导致代谢物的积累，特别是CO2，乳酸和氨[34]，因此应改变FU移植物储存溶液直至没有血液迹象。

10.3.2渗透压休克

移植物保持溶液的重量摩尔渗透压浓度在FU存活中起关键作用。细胞的内渗透压浓度约为290 mOsm-kg，此值的变化将影响许多重要因素，如细胞通透性和细胞内钙增加[35]。许多细胞内移植物保持溶液（例如，HypoThermosol，UW溶液）具有340-370mOsm-kg的高渗透压，其显著高于细胞的重量摩尔渗透压浓度。渗透压增加的目的是减少钾和其他细胞内离子泄漏，从而降低细胞去极化的机会，这可能导致细胞凋亡。当使用两种不同的移植物保持溶液或冲洗溶液（例如NS和HypoThermosol）时，应考虑渗透压休克的可能性。

10.3.3 FU温度的变化

大多数外科医生的共识是，低温储存导致更好的移植物存活。当低温储存降低组织的ATP消耗时，这当然是正确的。然而，还已知在降低的温度下储存组织可能导致可能影响移植物活力和功能的重大问题。例如，低温保存会导致蛋白质变性[36]，再加热后细胞膜通透性增加[37]，膜电位降低[38]。目前的研究表明，保存组织的最佳方案是使它们保持正常温度;然而，这需要专门的设备和维持组织ATP水平的方法，如氧合[39]。不幸的是，目前没有用于FU移植物的常温保存方案，因此需要在该领域进一步研究。

除了低温对FU移植物的影响之外，另一个问题是在FU处理期间发生的温度变化。在FUT剥离和FU隔离期间，通常使用盐水来保持移植物在解剖过程中水合。如果水合溶液的温度与移植物保持溶液不同，则可能存在可能降低移植物功能或活力的温度变化。这得到以下结果的支持：从37°C到30°C的轻微温度变化导致细胞周期从S期变为G1，从而降低细胞生长速率[40]。这些“轻微变化”显然会影响活体FU移植物的数量，和/或延迟移植物生长，因此需要进一步考虑。

10.4 HRS中的添加剂和治疗

人们对使用影响FU植入的各种添加剂和治疗方法有相当大的兴趣，并且可能潜在地增加移植物存活率。这些治疗中研究最多的是使用富含血小板的血浆（PRP），其通常通过在放置之前通过注射或在PRP中浸没移植物将其施用于头皮来使用。虽然血小板含有许多生长因子以及细胞外基质蛋白是没有争议的，但值得商榷的是这些因子的作用以及血小板活化在组织愈合方面的可重复性。 ACell和其他脱细胞细胞外基质增加细胞附着和细胞增殖，并已成功用于治疗伤口。然而，人体细胞的细胞外基质根据体内的位置和功能而变化，这可导致脱细胞基质的吸收和增加的瘢痕形成。最后，作者讨论了添加剂在移植物储存期间增加细胞内ATP水平的作用，以及这可能如何影响植入的FU移植物的愈合。

10.4.1富血小板血浆（PRP）

富含血小板的血浆（PRP）是血浆中的自体浓缩血小板悬浮液，已用于增强伤口愈合[41-43]。通过取少量患者的血液并离心样品以获得浓度为基线浓度3-5倍的血小板样品来制备PRP [44,45]。一旦准备好，一些方案要求在施用前激活PRP（或刺激血小板脱粒）。有几种激活PRP的方法，包括加入凝血酶或氯化钙。或者，一些方案要求注射PRP而不进行活化，这依赖于暴露于细胞外基质天然胶原蛋白时的血小板活化[46]。 Lubkowska等人。表明血小板活化甚至可以在血小板的收集，加工和储存过程中发生，这可能导致生长因子的丧失[47]（表10.3和10.4）。

表10.3 Williams E培养基和DMEM的组成


(续)

表 10.3  (续)


表10.4移植物保持溶液的总结


表10.5血小板含量和作用


a表10.5是血小板含量和生物学作用的简略列表

PRP含有无数的伤口愈合成分，包括生长因子，细胞因子和细胞粘附分子（见表10.5）。 释放的生长因子包括血小板衍生生长因子（PDGF），胰岛素样生长因子（IGF），血管内皮生长因子（VEGF），血小板衍生血管生成因子（PDAF）和转化生长因子-β（TGF-β））。 血小板脱粒导致这些生长因子的释放，这些生长因子又与其特异性细胞受体结合，增加靶细胞的促有丝分裂反应。 这种反应导致对伤口愈合至关重要的行为，例如血管生成，有丝分裂，趋化性和胶原合成等等[48]。

表10.6 ECM内容和行动


a表 10.2是ECM内容和生物行为的简略列表

虽然PRP是增强毛发移植中伤口愈合的最佳选择，但存在若干缺点。 PRP方案和结果随着血小板活化方法的不同而有很大差异[41]。其次，所使用的方法导致血小板数量，血小板活化率和释放的生长因子浓度变化[47]。 Martineau等人。表明较高浓度的钙和凝血酶引发TGF-β1和PDGF-BB的立即和显著增加，其在6天的时间内保持基本恒定。这与较低浓度的钙和凝血酶相反，后者导致生长因子释放的减少和延迟[53]。血小板也被证明可以预防肿瘤出血并增强肿瘤血管的稳定性[54]。 Ho-Tin-Noé等。研究显示，血小板缺乏引起的肿瘤出血可能与肿瘤类型无关，因为他们在皮下LLC肿瘤，B16F10黑色素瘤和肺转移中观察到相似的结果[54]。假设血小板中含有的促血管生成因子促进了肿瘤血液供应的发展，尽管促进肿瘤稳定性的确切成分仍有待鉴定[41,54]。

10.4.2 ACell / 基质

细胞外基质（ECM）在伤口愈合过程中起着重要作用[55,56]。 ECM含有多种成分，包括纤连蛋白，蛋白多糖，血小板反应蛋白和胶原蛋白[55,56]（见表10.6）。复杂的纤维网络形成支架或基质（与间质液结合）不仅可以抵抗拉伸和压缩应力，而且可以抵抗ECM和周围细胞的机械变化，并导致化学信号的转换，促进细胞粘附和迁移。愈合过程[55-57]。除了提供结构支持外，ECM成分通过募集酶去除细胞碎片，释放炎症介质，结合血小板和生长因子来刺激成纤维细胞，糖胺聚糖和胶原蛋白的血管生成，迁移和增殖，促进愈合过程[55， 58,59]。

MatriStem（ACell，Columbia，MD，USA）是一种由猪膀胱制成的脱水ECM医疗装置，无论是网状片还是粉末形式都是无菌的[64]。 MatriStem的处理允许去除离开胶原结构的所有细胞，这使得组织重塑和最终整合并重新吸收到伤口床中[64,65]。使基质去细胞化的过程还提供了益处，因为它减少了对异种移植组织的不良免疫应答的关注[66]。 MatriStem在伤口愈合应用中的应用已被证实具有部分和全厚度伤口，例如烧伤，糖尿病溃疡，压疮，甚至开放的皮肤伤口[65,67]。 Cooley等。证明了在毛发移植手术中使用MatriStem的好处，他的病例显示纤维化瘢痕减少[68]。

如果对伤口区域施加压力（例如，在毛发移植的情况下，条带闭合部位）导致片材移位，这可能导致瘘管形成[69]，则使用MatriStem网状片可能会引起问题。虽然ECM的处理减少了过敏反应的机会，但它并不能完全消除风险。 MatriStem的使用说明指出，任何已知敏感或过敏的患者都不应使用该产品[69]。最后，MatriStem的使用可能会因其猪的起源而引起宗教，文化和道德上的异议。

10.4.3 ATP和毛囊细胞存活率

众所周知，经历缺血或缺氧的细胞的细胞能量供应减少[70]。三磷酸腺苷（ATP）是细胞利用的主要能量货币，在蛋白质和脂质合成，信号转导，细胞有丝分裂和迁移以及膜通透性方面起着至关重要的作用[70-73]。 ATP主要在氧气存在下通过柠檬酸循环（或克雷布斯循环），电子传递和氧化磷酸化[74]制成，但可以利用糖酵解在厌氧条件下产生ATP。不幸的是，糖酵解仅产生好氧过程产生的ATP供应量的1/16 [70]，毛囊细胞主要依赖于有氧生成ATP [4]。植入FU后缺乏血流导致依赖于糖酵解，从而导致ATP缺乏，随后乳酸增加[73,75]。

除了作为能量供应之外，ATP还通过与嘌呤能受体（P2X和P2Y）结合而起到信号分子的作用[76-79]。 ATP的浓度范围为mmol / L（mM），而细胞外浓度则为nmol / L（nM）[79]。当毛囊细胞受损时，随后释放其内部ATP浓度，通过与P2X和P2Y受体结合发出一系列事件，从而导致血小板聚集[80]，炎症细胞的化学分类[78]，细胞增殖[81]，和血管生成[82]。 ATP也被证明能刺激caspase-1活性，从而通过P2X受体导致细胞凋亡[83]。虽然P2X刺激和随后的caspase-1激活的效果似乎不利，但这些作用促进免疫细胞的募集，释放炎症介质，清除细胞碎片，释放生长因子，如血管内皮生长因子（VEGF），以促进血管生成[82] ]。

在毛发移植过程中，待移植的移植物从其血液供应中移除，导致ATP产生减少[8]。一旦植入移植物，重建自己的血液需要数天[8]。由于细胞能量需求的性质以及手术后伤口愈合和组织重塑的需要，组织对ATP的需求很大。市场上有几种含有ATP或其代谢物（ADP，AMP和腺苷）的解决方案，如ATPv，HypoThermasol和威斯康星大学（UW）解决方案。这些溶液提供了直接提供ATP（ATPv）或腺苷以产生ATP（HypoThermasol，UW溶液，IGL-1溶液）的益处。 ATPv（能量输送解决方案，杰斐逊维尔，美国）是一种解决方案，将ATP封装在高度融合的脂质体中，快速结合并融合到向缺血细胞和组织输送ATP的细胞。 ATP的这种递送是独特的，因为游离ATP不能大量通过细胞膜以满足细胞的需要[84]。 ATP或腺苷的添加提供了益处，因为它有助于预防在缺血期间ATP被分解为次黄嘌呤时发生的缺血性再灌注损伤[73]。虽然腺苷的添加极大地有益于缺血组织，但是当能量储存被排出并且没有能量将腺苷磷酸化为ATP时，其益处是无效的。

10.5总结

所有植入的FU移植物中约85-95％将在1年内再生毛干。这一事实证明了经过培训的毛发移植外科医生和手术团队的才能，以及丰富的干细胞群体，可以再生FU。然而，这也意味着5-15％的移植卵泡不能存活，并且移植物保持溶液的选择可以帮助减少活FU的损失;相反，使用错误的保持解决方案会降低可行的FU。对HRS中最广泛使用的移植物保持溶液的综述清楚地表明，Plasma-Lyte A或HypoThermosol可能增加移植物存活率。 NS和RL的使用均可对FU存活产生负面影响，应予以避免。

除移植物保持溶液外，温度，pH和渗透压的物理参数可在降低FU存活率方面发挥重要作用。任何这些参数的轻微变化都会导致移植失败。外科医生应避免移植物保持溶液和冲洗/保湿溶液的pH和渗透压的变化。建议洗涤FU以去除残留的血液，并且在移植物储存期间改变移植物保持溶液以减少代谢物的积累。

有几种添加剂和治疗方法可以帮助提高FU的存活率和功能。局部施用，皮肤滚动或注射的活化PRP使植入的FU移植物附近的生长因子，细胞因子，金属蛋白酶，止血因子和其他细胞介质的局部浓度高。因此，PRP应该增加FU移植物的存活率，但不幸的是，PRP活化的潜在变化可能导致这些因子的时间和浓度的变异性增加。此外，生长因子的高定位浓度可能增加肿瘤形成的可能性。需要进一步的临床研究来进一步阐明PRP在HRS中的益处和风险。

在供体和受体部位伤口中使用MatriStem增加了细胞外基质支架，使伤口边界细胞增殖。这显然是新植入的缺氧FU移植物的优势，因为它减少了细胞外基质蛋白生成所需的ATP消耗。在移植物隔离期间保存ATP或帮助增加FU中细胞溶质ATP的策略直到术后第2-3天，对于预防再灌注损伤至关重要。在这个关键时期帮助维持ATP水平有两个主要策略，包括使用ATP前体或将ATP封装在脂质体中。对MatriStem和ATP保存策略的额外临床研究将有助于更好地定义这些影响FU移植物存活和功能的方式。

参考：Practical Aspects of Hair Transplantation in Asians